细菌回复突变试验（Ames试验）：评估艾地骨化醇能否诱发沙门氏菌或大肠杆菌测试菌株的基因回复突变，是检测基因点突变的核心初筛项目。
体外哺乳动物细胞染色体畸变试验：在培养的中国仓鼠卵巢（CHO）细胞或人外周血淋巴细胞中，检测艾地骨化醇是否引起染色体结构畸变。
体外小鼠淋巴瘤细胞TK基因突变试验：通过检测L5178Y小鼠淋巴瘤细胞胸苷激酶（TK）位点的突变频率，评估其致基因突变和染色体损伤的能力。
体内哺乳动物红细胞微核试验：通过给啮齿类动物给药后，观察骨髓或外周血中未成熟红细胞内微核的形成，以检测体内染色体断裂或纺锤体功能损伤。
体内哺乳动物骨髓细胞染色体畸变试验：直接分析给药动物骨髓细胞中期相染色体的数目和结构异常，提供体内染色体损伤的直接证据。
彗星试验（单细胞凝胶电泳）：在体外或体内条件下，检测艾地骨化醇是否引起单个细胞的DNA链断裂，是一种灵敏的DNA损伤检测项目。
程序外DNA合成试验：评估受试物是否诱导细胞在DNA合成期外进行DNA修复合成，从而间接反映其造成的DNA损伤。
转基因动物突变试验（如Muta™Mouse, Big Blue®）：利用转基因啮齿类动物模型，从体内环境中直接检测艾地骨化醇在多种组织器官中诱发基因突变的频率和谱型。
姐妹染色单体交换试验：观察细胞有丝分裂中期姐妹染色单体之间的交换频率，作为DNA损伤与修复的敏感指标。
体外微核试验（胞质分裂阻滞法）：在添加细胞松弛素B的体外培养细胞中，特异性分析一次有丝分裂后双核细胞中的微核，评估染色体丢失或断裂。
基因点突变：主要检测DNA序列中单个或少数几个碱基对的改变，如碱基置换、插入或缺失。
染色体结构畸变：包括染色体断裂产生的缺失、碎片，以及重排形成的易位、倒位、环状染色体等。
染色体数目畸变（非整倍体）：评估药物是否干扰纺锤体功能，导致细胞丢失或获得整条染色体。
DNA链断裂：检测包括单链断裂和双链断裂在内的直接DNA损伤，是许多遗传事件的起始。
DNA加合物形成：间接评估艾地骨化醇或其代谢产物是否与DNA共价结合形成加合物，引发突变。
DNA修复诱导：考察细胞在受试物作用下启动的DNA修复反应，作为遗传毒性应激的标志。
生殖细胞突变潜能：通过特定试验设计（如转基因动物生殖器官分析），评估其对遗传给后代的风险。
体细胞突变：在生物体非生殖细胞中发生的可遗传的基因改变，与致癌风险密切相关。
有丝分裂重组：检测可能导致杂合性丢失的同源染色体间的遗传物质交换。
基因组不稳定性：综合评估药物诱发长期、广泛的遗传物质改变趋势，是高级别的风险评估范围。
平板掺入法/预培养法（Ames试验）：将测试菌株、受试物及代谢活化系统混合后倾注平板，计数回变菌落数以判断致突变性。
细胞培养与染毒处理法：将哺乳动物细胞在含系列浓度艾地骨化醇的培养液中暴露特定时间，可加S9代谢活化。
中期相染色体标本制备与分析法：用秋水仙素阻断细胞于分裂中期，低渗、固定后制片，吉姆萨染色，显微镜下分析染色体畸变。
微核标本制备与计数法：采集骨髓或血液细胞，涂片并经特定染料（如吉姆萨-瑞氏）染色后，于光学显微镜下计数微核细胞率。
克隆形成法（TK试验）：将暴露后的淋巴瘤细胞接种于含选择性试剂（三氟胸苷）的培养基中，计数形成的突变克隆集落。
单细胞凝胶电泳技术（彗星试验）：将处理后的单个细胞包埋于琼脂糖凝胶中，裂解、碱解旋后电泳，荧光染色观察“彗星”拖尾。
放射自显影或液体闪烁计数法（UDS试验）：通过掺入氚标记的胸腺嘧啶核苷并检测其掺入量，来测量非计划DNA合成水平。
转基因动物器官组织DNA提取与突变筛选法：从给药动物的靶组织提取基因组DNA，利用载体救援或PCR技术回收报告基因进行突变分析。
CBMN法（胞质分裂阻滞微核试验）：利用细胞松弛素B阻滞胞质分裂形成双核细胞，从而只对经历一次有丝分裂的细胞进行微核评分。
SOP标准操作规程执行：所有试验均严格遵循国际公认的指导原则（如ICH S2(R1)、OECD指南）和实验室内部标准操作规程以确保数据可靠性。
二级生物安全柜/超净工作台：为无菌细胞操作、细菌试验提供洁净环境，防止微生物污染并保护操作者安全。
CO2恒温培养箱：为哺乳动物细胞、细菌的培养提供恒定的温度、湿度和二氧化碳浓度环境。
-80℃超低温冰箱及液氮罐
