细胞存活率测定：评估毒黄素处理后活细胞占总细胞的比例，是衡量细胞毒性的最基本指标。
细胞增殖抑制率：量化毒黄素对细胞分裂和增殖能力的抑制效果，反映其长期毒性影响。
细胞膜完整性检测：通过检测乳酸脱氢酶（LDH）释放等，判断毒黄素是否破坏细胞膜结构。
线粒体功能评估：测量线粒体脱氢酶活性（如MTT法），反映细胞能量代谢状态是否受损。
细胞内活性氧（ROS）水平：检测毒黄素诱导的氧化应激水平，是早期细胞损伤的重要标志。
细胞凋亡率分析：通过Annexin V/PI双染等方法，定量分析毒黄素诱导的程序性细胞死亡。
细胞周期分布检测：分析毒黄素处理对细胞周期各时相（G1， S， G2/M）的影响，揭示其作用机制。
DNA损伤检测：评估毒黄素是否引起DNA链断裂或碱基损伤，如彗星实验（单细胞凝胶电泳）。
细胞内钙离子浓度变化：监测毒黄素引起的细胞内钙稳态失衡，这与多种细胞毒性通路相关。
炎症因子表达水平：检测白细胞介素、肿瘤坏死因子等因子的表达变化，评估毒黄素的免疫毒性。
人类肿瘤细胞系：如HeLa、HepG2、A549等，用于评估毒黄素的抗肿瘤潜力或毒性。
正常人类体细胞：如肝细胞（LO2）、肾上皮细胞、成纤维细胞等，用于评价对正常组织的毒性。
动物源细胞系：如中国仓鼠卵巢细胞（CHO）、小鼠成纤维细胞（3T3）等，用于基础毒理学研究。
原代培养细胞：直接从组织分离的细胞，能更真实地反映体内细胞的反应。
干细胞：包括胚胎干细胞和诱导多能干细胞，用于评估发育毒性。
血液系统细胞：如淋巴细胞、单核细胞，用于评价免疫抑制或血液毒性。
神经细胞系：如PC12、SH-SY5Y，用于研究神经毒性作用。
水生生物细胞系：如鱼类上皮细胞，用于环境毒理学和水生态风险评估。
三维（3D）细胞球模型：比二维培养更能模拟体内微环境，用于更精确的毒性预测。
共培养体系：多种细胞共同培养，用于研究毒黄素在复杂细胞互作下的毒性效应。
MTT比色法：通过线粒体琥珀酸脱氢酶还原黄色MTT为紫色甲臜，间接反映活细胞数量。
CCK-8法：基于水溶性四唑盐WST-8的还原反应，灵敏度高且操作简便。
乳酸脱氢酶（LDH）释放法：定量检测从受损细胞膜泄漏到培养基中的LDH活性，直接反映膜损伤。
台盼蓝染色排除法：经典的活死细胞鉴别方法，死细胞因膜通透性改变而被染成蓝色。
Annexin V-FITC/PI双染流式法：区分早期凋亡、晚期凋亡和坏死细胞的经典流式方法。
Caspase-3/7活性检测：通过荧光底物检测关键凋亡执行蛋白酶的活性，确认凋亡途径激活。
活性氧（ROS）荧光探针法：使用DCFH-DA等荧光探针，在流式或荧光显微镜下检测ROS水平。
彗星实验（单细胞凝胶电泳）：在电场作用下，受损细胞的DNA形成彗星状拖尾，直观显示DNA断裂程度。
流式细胞术PI染色法：通过碘化丙啶（PI）染色DNA，分析细胞的周期分布情况。
实时无标记细胞分析（RTCA）：通过微电极监测细胞阻抗变化，实时、动态地评估毒性过程。
酶标仪（微孔板读数仪）：用于读取MTT、CCK-8、LDH等比色或荧光实验的光密度或荧光值。
流式细胞仪：进行多参数分析的核心设备，用于凋亡、周期、ROS及表面标志物检测。
倒置荧光显微镜：观察细胞形态、荧光探针定位及进行活细胞成像分析。
共聚焦激光扫描显微镜：获取高分辨率、三维的细胞内荧光图像，用于精细定位和定量分析。
生物安全柜/超净工作台：提供无菌操作环境，保障细胞培养和实验过程免受污染。
二氧化碳培养箱: 维持恒定的温度、湿度和CO₂浓度，为体外培养的细胞提供稳定的生长环境。
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