静息电位：测量心肌细胞在未受刺激时，细胞膜内外稳定的电位差，是动作电位产生的基础。
动作电位幅度：记录动作电位上升支从静息电位到峰值的最大电压变化值，反映钠离子内流强度。
动作电位时程：测量从动作电位起始到完全复极所经历的总时间，是评估复极过程的关键指标。
0期去极化最大速率：量化动作电位上升支的最大斜率，直接反映快钠通道的开放速度和强度。
平台期电位与时长：分析动作电位2期的膜电位水平及其持续时间，与钙离子内流和钾离子外流平衡相关。
复极90%时程：测量从动作电位起始到复极完成90%的时间，是评价药物致心律失常风险的核心参数。
有效不应期：测定刺激不能再次引发可传播动作电位的时间窗口，反映心肌细胞的兴奋性恢复情况。
起搏细胞自律性频率：记录窦房结等自律性细胞自发产生动作电位的节律，评估起搏功能。
后除极电位：检测在正常动作电位复极完成后或过程中出现的异常振荡电位，与触发活动性心律失常相关。
传导速度：测量电冲动在心肌组织或单细胞层面的传播速度，评估传导系统的功能完整性。
离体动物心脏标本：如Langendorff灌流的心脏，用于研究整体心脏水平的电生理特性。
心肌组织切片：保留部分细胞连接和组织结构的薄片，用于研究局部电传导和异质性。
分离的单个心肌细胞：包括心室肌、心房肌、浦肯野纤维及窦房结细胞，用于细胞水平的精准机制研究。
干细胞分化心肌细胞：评估诱导多能干细胞分化来源的心肌细胞的电生理成熟度及疾病模型构建。
基因编辑细胞模型：针对特定离子通道基因进行敲除或突变后的细胞，用于研究通道功能及遗传性心律失常。
药物安全性评价样本：在药物作用下观察心肌细胞电生理参数变化，预测其潜在的心脏毒性（如致QT间期延长）。
病理模型样本：如心力衰竭、心肌肥厚、心肌梗死等疾病模型的心脏组织或细胞，研究病理状态下的电重构。
离子通道病研究样本：来自长QT综合征、Brugada综合征等患者的诱导多能干细胞分化心肌细胞。
起搏与传导系统组织：专门研究窦房结、房室结、希浦系统等特殊传导组织的电活动特性。
三维心肌微组织或类器官：更接近体内复杂结构的工程化组织，用于研究多细胞耦合下的电生理行为。
标准玻璃微电极细胞内记录：使用充满电解质的玻璃微电极刺入细胞内，直接记录跨膜电位，是经典的金标准方法。
膜片钳技术（全细胞模式）：通过高阻封接和破膜，记录整个细胞膜上所有离子通道电流总和产生的动作电位。
膜片钳技术（穿孔膜片模式）：使用制霉菌素等在膜上形成微孔，进行电记录的同时更好地保持细胞内环境稳定。
微电极阵列场电位记录：在培养皿底部集成多个微电极，非侵入性地同步记录单层或三维细胞群的场电位信号。
光学标测技术：使用电压敏感性荧光染料，通过荧光强度变化反映膜电位变化，可实现多点同步记录与空间成像。
电压敏感染料荧光成像：将特异性电压敏感染料加载到细胞膜上，利用高速相机捕捉其荧光变化以绘制动作电位传播图。
基于阻抗的动作电位分析：通过分析细胞对特定频率电信号的阻抗变化来间接推断其电活动状态，适用于长期无损监测。
计算机模拟与建模分析：利用数学模型（如Luo-Rudy模型）整合实验数据，模拟和预测不同条件下动作电位的变化。
程序性电刺激法：施加一系列特定频率和模式的电刺激，测定不应期、诱发心律失常等，评估组织兴奋性与传导性。
多参数同步联合检测：将膜片钳与钙成像、收缩力测量等技术同步结合，研究电-机械耦合等综合生理过程。
膜片钳放大器系统：核心设备，提供高增益、低噪声的电流/电压信号放大与转换功能，并控制钳制电压或电流。
玻璃微电极控制仪：用于精确拉制、抛光及填充用于细胞内记录或膜片钳记录的玻璃微电极。
三维显微操纵器：高精度机械或电动设备，用于在显微镜下精确操控微电极的位置以接触或穿刺细胞。
防震实验台与屏蔽网罩：隔离地面震动和环境电磁干扰，为微弱电生理信号记录提供稳定的物理环境。
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