细胞活力测定：评估聚甘油果酸酯对神经元或神经胶质细胞存活率的影响，是神经毒性初筛的核心指标。
细胞形态学观察：通过显微镜观察神经元胞体、轴突和树突的形态变化，判断其结构完整性是否受损。
乳酸脱氢酶释放率：定量检测细胞培养上清中LDH的活性，反映细胞膜完整性及细胞损伤程度。
活性氧水平检测：测定细胞内活性氧物种的生成量，评估聚甘油果酸酯是否诱导氧化应激。
细胞内钙离子浓度：监测胞内Ca2+稳态的变化，钙超载是神经细胞凋亡的重要早期信号。
线粒体膜电位检测：评估线粒体功能状态，膜电位下降是细胞走向凋亡的关键标志。
细胞凋亡率分析：通过Annexin V/PI双染等方法，定量分析早期与晚期凋亡细胞的比例。
神经递质相关酶活性：检测乙酰胆碱酯酶、单胺氧化酶等关键酶的活性变化，评估神经功能影响。
炎症因子表达水平：测定胶质细胞释放的TNF-α、IL-1β、IL-6等因子，评估神经炎症反应。
神经营养因子表达：分析BDNF、NGF等因子的基因或蛋白表达水平，判断其对神经元支持功能的影响。
原代培养神经元：取自大鼠或小鼠胚胎皮层、海马等脑区的原代神经元，是评价神经毒性的经典模型。
永生化神经细胞系：如PC12（大鼠嗜铬细胞瘤）、SH-SY5Y（人神经母细胞瘤）等，用于高通量初步筛选。
神经胶质细胞系：包括小胶质细胞系（如JianCe2）和星形胶质细胞系，用于评估神经炎症及间接毒性。
三维脑类器官模型：由人多能干细胞分化形成的类脑组织，能更真实地模拟复杂脑微环境与发育过程。
斑马鱼幼鱼模型：利用其通体透明特性，在体观察聚甘油果酸酯对神经系统发育及行为的影响。
大鼠/小鼠体内实验：通过灌胃或注射给药后，取脑组织进行病理、生化及行为学分析。
离体脑片培养：保留局部神经网络结构的海马或皮层脑片，用于研究突触传递和网络功能的毒性效应。
血脑屏障通透性模型：使用共培养的脑微血管内皮细胞模型，评估聚甘油果酸酯穿透血脑屏障的能力。
特定脑区靶向研究：重点关注对海马（学习记忆）、黑质（运动控制）等关键功能脑区的毒性。
发育期神经系统：针对胚胎期或新生期动物模型，评估聚甘油果酸酯的发育神经毒性风险。
MTT/CCK-8法：基于线粒体还原酶活性，通过比色法快速、定量地检测细胞增殖与活力抑制情况。
台盼蓝染色排除法：经典的死细胞鉴别方法，通过计算未着色活细胞的比率来评估急性毒性。
Hoechst 33342/PI双染法：荧光染色区分活细胞、凋亡细胞和坏死细胞，并在荧光显微镜下观察核形态变化。
<强实时荧光定量PCR: 在mRNA水平上定量分析炎症因子、凋亡相关基因及神经营养因子基因的表达差异。
<强免疫荧光染色技术: 对神经元特异性标记蛋白（如β-III Tubulin, MAP2）进行染色，直观显示神经元形态与数量的改变。
<强微电极阵列记录技术: 记录神经元网络的自发电活动及电刺激诱发反应，从功能层面评估神经毒性。
<强动物行为学测试: 包括旷场实验、水迷宫、旋转棒测试等，整体评价聚甘油果酸酯对动物运动、学习记忆能力的影响。
<强酶标仪: 用于读取MTT、CCK-8、LDH等比色或荧光实验的吸光度或荧光值，是细胞毒性检测的核心设备。
<强倒置荧光显微镜: 配备相差和荧光模块，用于观察活细胞形态、荧光探针标记的ROS、钙离子及凋亡情况。
<强流式细胞仪: 配备多激光器和检测器，用于高精度地分析细胞凋亡率、周期分布及细胞内ROS、钙离子水平。
<强激光共聚焦显微镜: 可获得高分辨率的三维断层图像，用于精细观察神经元结构、蛋白定位及共定位分析。
<强实时荧光定量PCR仪: 用于对微量RNA样本中的目标基因进行高灵敏度、高特异性的定量分析。
<强蛋白电泳及转印系统: 包括电泳槽、电源和湿转/半干转印仪，用于完成Western Blot实验的蛋白分离与转移。
<强化学发光成像系统: 用于捕获Western Blot膜上化学发光信号，对目标蛋白条带进行定性和半定量分析。
<强微电极阵列记录系统: 包含多通道记录芯片、放大器及数据分析软件，用于长时间监测神经网络电生理活动。
<强动物行为学分析系统: 包括视频跟踪软件、水迷宫装置、旋转棒等自动化设备，客观记录和分析动物行为数据。
<强超高效液相色谱-质谱联用仪: 用于精确测定生物样本（如脑组织匀浆）中聚甘油果酸酯及其代谢产物的含量与分布。
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