细胞形态学观察：通过光学或荧光显微镜观察细胞皱缩、染色质凝集、凋亡小体形成等典型凋亡形态特征。
细胞膜磷脂酰丝氨酸外翻检测：利用Annexin V与磷脂酰丝氨酸（PS）的高亲和力，检测早期凋亡细胞PS外翻现象。
细胞膜完整性检测：使用碘化丙啶（PI）等非透过性染料，区分晚期凋亡和坏死细胞。
线粒体膜电位变化：采用JC-1、罗丹明123等荧光探针，检测线粒体膜电位下降，反映早期凋亡事件。
Caspase家族蛋白酶活性测定：通过荧光底物或Western Blot等方法，检测Caspase-3、-8、-9等关键执行蛋白的激活情况。
DNA片段化分析：采用TUNEL标记法或DNA ladder凝胶电泳，检测凋亡晚期特征性的DNA断裂。
细胞内活性氧水平检测：使用DCFH-DA等荧光探针，评估二氢茚酮诱导的氧化应激水平变化。
细胞周期分布分析：通过PI染色流式细胞术，分析亚G1期峰（凋亡峰）比例，量化凋亡细胞群体。
凋亡相关蛋白表达量检测：利用Western Blot或免疫荧光技术，检测Bcl-2、Bax、PARP等蛋白的表达及剪切变化。
细胞存活率/增殖抑制率测定：采用CCK-8、MTT等方法，综合评价二氢茚酮对细胞活力的影响。
肿瘤细胞系：适用于肝癌、肺癌、乳腺癌、结肠癌等多种人类或动物来源的肿瘤细胞系研究。
原代培养细胞：可用于从患者组织或动物模型中分离培养的原代细胞，评估药物敏感性。
血液系统恶性肿瘤细胞：特别适用于白血病、淋巴瘤等悬浮生长细胞的凋亡诱导研究。
耐药性肿瘤细胞模型：用于评价二氢茚酮对多药耐药肿瘤细胞的凋亡诱导能力。
正常对照细胞：常选用相应的正常组织来源细胞，评估化合物的选择性毒性。
不同浓度药物处理组：设置系列浓度梯度，测定二氢茚酮的剂量依赖性凋亡效应。
不同时间点处理组：在给药后多个时间点取样，分析凋亡过程的动力学特征。
联合用药处理组：研究二氢茚酮与化疗药物、靶向药物联用对细胞凋亡的协同或拮抗作用。
基因修饰细胞模型：在过表达或敲低特定基因（如凋亡相关基因）的细胞中，研究二氢茚酮的作用机制。
三维培养或类器官模型：拓展至更接近体内微环境的三维培养体系，评估其促凋亡效果。
Annexin V-FITC/PI双染流式细胞术：金标准方法，可同时区分活细胞、早期凋亡、晚期凋亡及坏死细胞。
TUNEL末端标记法：特异性标记DNA断裂末端，用于组织切片或细胞爬片的原位凋亡检测。
Caspase活性荧光分光光度法：使用含特定酶切序列的荧光底物，定量测定裂解后Caspase酶的催化活性。
Hoechst 33342/PI双染荧光显微术：通过两种染料区分不同状态的细胞核形态，进行形态学计数。
DNA Ladder琼脂糖凝胶电泳法：提取细胞基因组DNA进行电泳，观察特征性的梯状条带。
<强Western Blot蛋白免疫印迹法：半定量分析凋亡通路中关键蛋白的表达水平及剪切情况。
<强CCK-8/MTT比色法：基于线粒体脱氢酶活性，间接反映细胞存活与增殖状态，辅助判断凋亡。
<强实时细胞分析技术：通过阻抗法无标记、动态监测药物处理过程中细胞的生长与死亡情况。
<强免疫荧光/免疫组化染色法：在细胞或组织原位可视化特定凋亡标志蛋白的定位与表达变化。
<强流式细胞仪：进行Annexin V/PI染色、细胞周期、活性氧等多参数高通量定量分析的核心设备。
<强倒置荧光显微镜：配备特定滤光片，用于观察荧光染色后的活细胞或固定细胞的凋亡形态。
<强酶标仪：用于读取CCK-8、MTT、Caspase活性等基于微孔板的吸光度或荧光信号。
<强激光共聚焦显微镜：获得高分辨率的三维图像，用于精确定位细胞内凋亡相关信号分子。
<强荧光分光光度计：对溶液中游离的荧光标记物进行定量检测，如Caspase活性测定。
<强凝胶成像系统：用于拍摄和定量分析DNA Ladder电泳条带及Western Blot胶片。
<强实时无标记细胞分析仪：如RTCA系统，可长时间动态监测细胞阻抗变化，反映凋亡过程。
<强超净工作台/生物安全柜：为无菌条件下的细胞培养、药物处理及取样操作提供洁净环境。
<强二氧化碳培养箱：维持恒定的温度、湿度和CO2浓度，确保处理期间细胞的正常生理状态。
<强高速冷冻离心机：用于快速沉淀细胞，收集上清或细胞沉淀以进行后续各类生化分析。
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