细胞增殖抑制实验：通过MTT或CCK-8等方法，定量检测甲基苯基苯甲醇对特定肿瘤细胞系增殖的抑制作用。
克隆形成能力检测：评估药物处理后，单个肿瘤细胞形成集落的能力，反映其对肿瘤细胞长期增殖和生存的影响。
细胞周期分布分析：利用流式细胞术检测药物对肿瘤细胞周期进程的影响，判断其是否引起细胞周期阻滞。
细胞凋亡检测：通过Annexin V/PI双染法或Caspase活性测定，定量分析药物诱导肿瘤细胞发生程序性死亡的程度。
细胞迁移与侵袭实验：采用Transwell或划痕愈合实验，评估药物对肿瘤细胞迁移和侵袭能力的抑制效果。
活性氧水平检测：利用DCFH-DA等荧光探针，检测药物是否诱导肿瘤细胞内活性氧的生成，探究其可能的细胞毒性机制。
线粒体膜电位检测：通过JC-1等染料，评估药物对肿瘤细胞线粒体功能的影响，常与凋亡通路相关。
蛋白质印迹分析：检测药物处理后，肿瘤细胞内关键信号通路蛋白（如凋亡、自噬相关蛋白）的表达水平变化。
基因表达谱分析：利用qPCR或基因芯片技术，分析药物对肿瘤细胞中多个基因转录水平的影响。
体内抑瘤率实验：在动物移植瘤模型中，测量给药后肿瘤体积和重量的变化，计算抑瘤率，评估体内抗肿瘤活性。
人源肿瘤细胞系：涵盖常见实体瘤及血液肿瘤细胞系，如MCF-7（乳腺癌）、A549（肺癌）、HepG2（肝癌）、HeLa（宫颈癌）等。
小鼠源肿瘤细胞系：用于构建同种移植瘤模型的细胞系，如4T1（乳腺癌）、B16（黑色素瘤）、CT26（结肠癌）等。
原代肿瘤细胞：从临床肿瘤组织样本中分离培养的细胞，用于更贴近临床的药效评价。
耐药性肿瘤细胞株：对常规化疗药物耐药的细胞株，用于评估甲基苯基苯甲醇是否具有克服耐药性的潜力。
肿瘤干细胞：具有自我更新和分化能力的肿瘤细胞亚群，检测药物对其的靶向作用。
正常细胞系：如人脐静脉内皮细胞或人胚肺成纤维细胞，用于评估药物的选择性毒性（治疗窗口）。
小鼠皮下移植瘤模型：最常用的体内药效模型，将肿瘤细胞接种于小鼠皮下，便于观察和测量肿瘤生长。
小鼠原位移植瘤模型：将肿瘤细胞接种于其原发器官（如肝脏、肺部），能更好地模拟肿瘤微环境。
人源肿瘤异种移植模型：将人源肿瘤组织或细胞接种于免疫缺陷小鼠，用于评价药物对人源肿瘤的作用。
转基因或基因工程小鼠肿瘤模型：模拟特定基因驱动下自发成瘤的模型，用于研究药物在更复杂背景下的效果。
MTT比色法：基于活细胞线粒体中的琥珀酸脱氢酶还原MTT形成紫色甲瓒的原理，通过测定光密度值反映细胞活力。
CCK-8法：利用水溶性四唑盐被细胞内脱氢酶还原生成橙色甲瓒染料，灵敏度高，操作简便。
流式细胞术：用于快速、定量分析细胞周期、细胞凋亡、细胞表面标志物及细胞内活性氧水平等。
克隆形成实验：将低密度接种的细胞经药物处理后培养，固定染色并计数大于一定细胞数的集落。
Transwell小室迁移/侵袭实验：将细胞接种于上室，下室含趋化因子，通过计数穿过微孔膜（包被或不包被基质胶）的细胞数评估迁移侵袭能力。
划痕愈合实验：在单层细胞上制造划痕，定时观察并测量划痕区域的闭合情况，评估细胞迁移能力。
蛋白质免疫印迹：将细胞蛋白样品经电泳、转膜后，用特异性抗体检测目标蛋白的表达与修饰情况。
实时荧光定量PCR：从细胞中提取RNA并反转录为cDNA，通过荧光信号扩增曲线定量特定基因的mRNA表达水平。
免疫组织化学/免疫荧光：对肿瘤组织切片进行染色，在组织原位观察特定蛋白的表达与定位。
动物模型体内成像：利用生物发光或荧光标记的肿瘤细胞，通过活体成像系统无创、动态监测肿瘤生长和转移。
二氧化碳培养箱：为体外培养的肿瘤细胞提供恒定的温度、湿度和CO2浓度环境。
生物安全柜：提供无菌操作环境，用于细胞培养、传代及加药处理等实验操作。
倒置显微镜：用于日常观察细胞形态、生长密度以及进行划痕实验的观察记录。
酶标仪：用于读取MTT、CCK-8等实验的吸光度值，进行细胞活力的定量分析。
流式细胞仪：进行细胞周期、凋亡、细胞内信号分子等多参数高通量检测的核心设备。
荧光显微镜：用于观察免疫荧光染色、JC-1染色等荧光标记的样品。
蛋白电泳及转膜系统：包括电泳槽、电源和转膜仪，用于蛋白质印迹分析中的蛋白分离与转移。
化学发光成像系统：用于检测和记录蛋白质印迹、凝胶电泳等实验中化学发光或荧光信号。
实时荧光定量PCR仪：用于基因表达水平的精确定量分析。
小动物活体成像系统：无创、实时监测小动物体内肿瘤的生长、转移及生物发光信号。
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