总DNA提取：从植物细胞核、叶绿体及线粒体中分离纯化基因组DNA，用于PCR、测序等分析。
总RNA提取：分离包含mRNA、rRNA、tRNA在内的全部RNA分子，用于转录组研究。
mRNA分离纯化：从总RNA中进一步富集带有多聚腺苷酸尾的信使RNA，用于构建文库。
质粒DNA提取：从转基因植物或农杆菌侵染的组织中提取外源质粒DNA。
核酸浓度测定：使用分光光度法或荧光法精确测定所提核酸的浓度。
核酸纯度评估：通过吸光度比值（A260/A280， A260/A230）判断蛋白质、盐类等杂质残留。
核酸完整性检测：通过琼脂糖凝胶电泳观察DNA条带或RNA的28S/18S条带比例，评估降解情况。
多糖多酚去除效率：评估纯化方法对植物组织中常见干扰物质的清除效果。
核酸得率计算：以每克鲜重或干重组织获得的核酸微克数来评价提取效率。
下游应用兼容性测试：验证纯化后的核酸是否适用于PCR、酶切、杂交等后续实验。
叶片组织：如拟南芥、水稻、玉米等植物的幼嫩或成熟叶片，是常用的核酸来源。
根组织：包括根尖、侧根等，富含代谢物，提取时需特别注意杂质去除。
种子与胚乳：油脂和淀粉含量高，需要特殊的裂解液成分以破除细胞壁并去除干扰。
花器官：包括花瓣、雄蕊、雌蕊等，用于研究花发育相关基因的表达。
果实组织：如番茄果肉、苹果果皮等，通常多糖含量丰富，提取难度较大。
愈伤组织与悬浮细胞：来源于植物体外培养体系，细胞壁较薄，易于裂解。
木质部与韧皮部：需进行精细的显微分离，以获得特定维管组织的核酸。
休眠芽与分生组织：细胞分裂活跃，核酸质量通常较高，但样本量较少。
藻类与苔藓：作为低等植物，其细胞结构特殊，需调整裂解条件。
药用植物组织：通常含有大量次生代谢物，对核酸纯化过程构成严峻挑战。
CTAB法：使用十六烷基三甲基溴化铵裂解细胞并沉淀核酸，尤其适用于多糖多酚含量高的组织。
SDS法：采用十二烷基硫酸钠变性蛋白质并与核酸分离，是一种经典的提取方法。
硅胶膜离心柱法：在高盐条件下使核酸特异性吸附于硅胶膜，通过漂洗和洗脱实现快速纯化。
磁珠法：利用包被有硅羟基的磁珠在磁场作用下吸附和分离核酸，易于实现自动化。
TRIzol试剂法：基于酚-异硫氰酸胍的一步法，能同时分离RNA、DNA和蛋白质。
氯化铯密度梯度离心法：利用超速离心根据浮力密度分离核酸，可获得极高纯度的DNA。
酶解法: 使用纤维素酶、果胶酶等温和裂解细胞壁，适用于原生质体的核酸提取。
<强>液氮研磨法: 在液氮低温下将组织迅速研磨成细粉，是有效破碎植物细胞的关键前处理步骤。
<强>苯酚-氯仿抽提法: 利用有机溶剂交替抽提，去除蛋白质和脂质等杂质，是经典的纯化步骤。
<强>乙醇/异丙醇沉淀法: 在盐存在下利用醇类使核酸从溶液中沉淀出来，进行浓缩和除盐。
<强>冷冻研磨仪: 通过高频振荡在低温下快速、均一地粉碎植物组织，防止核酸降解。
<强>高速冷冻离心机: 用于细胞碎片沉淀、有机相分离及核酸沉淀的收集等关键步骤。
<强>微量分光光度计: 使用微量样品（1-2μL）快速测定核酸的浓度和纯度（A260/A280）。
<强>琼脂糖凝胶电泳系统: 包括电泳槽和电源，用于直观评估核酸的完整性和片段大小。
<强>恒温水浴锅/金属浴: 提供精确的温控环境，用于样品的孵育、裂解和酶解反应。
<强>涡旋振荡器: 用于快速混匀样品与试剂，确保反应充分进行。
<强>移液器: 精确转移微量液体（从0.1μL到1mL），是保证实验准确性的基础工具。
<强>超净工作台/生物安全柜: 提供无菌操作环境，防止RNA酶污染及样品间的交叉污染。
<强>-80°C/-20°C冰箱: 用于长期或短期保存植物组织样本、提取试剂及纯化后的核酸产物。
<强>全自动核酸提取仪: 整合磁珠法或离心柱法原理，实现高通量、标准化的核酸纯化流程。
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